Application Note 不連続カイネティック測定を用いた長期細胞増殖測定

はじめに

多くの生物製剤実験では、長時間（数時間、数日、あるいは数週間）にわたってセル増殖のモニタリングや酵素変化の測定を行う必要がある。加えて、ある種のモデル生物は、マイクロプレートリーダーで長期間保存することができない。例えば藻類の培養は、生育を成功させるために定期的に光と高次の湿度に曝す必要があり、藻類の生育条件の比較研究は数週間にわたって測定される1。長期のカイネティック測定は、酵素動態、細胞シグナル伝達、タンパク質発現など、生物学の他の側面の研究にも利用できる。しかし、このようなアッセイをマイクロプレートリーダーで長期連続カイネティック測定すると、リーダーを長時間占有することになり、ラボの効率が大幅に低下する。さらに、一連のエンドポイント測定を行うと、カイネティックプロットを作成するために手作業で連結しなければならないデータセットが得られる。

Molecular DevicesマイクロプレートリーダーとSoftMax® Proソフトウェアを使用することで、研究者はソフトウェアのInterrupt機能とAppend機能（図1）を使用して、長時間にわたって測定を行うことができるようになりました。これらの機能により、培地添加やその他の実験のためにマイクロプレートをインストゥルメンテーションから取り外し、カイネティック測定を再開することができる。

このアプリケーションノートでは、SpectraMax® iD3マルチモードマイクロプレートリーダーの不連続カイネティック測定プロトコルを使用して、24時間にわたって600 nmの吸光度（OD600として報告）を測定する方法を示します。

材料

• 96ウェル底透明ポリスチレン製マイクロプレート (Greiner cat. # 651101)
• BactoBeads™ 大腸菌 GFP ホスト (Edvotek cat. #728)
• 溶菌ブロス（LB、Sigma Aldrich cat.#L2542）
• アンピシリン(Sigma Aldrich cat. #A0166-5G)
• SpectraMax iD3マルチモードマイクロプレートリーダー (モレキュラーデバイセズ社、型番: iD3)

方法

OD600値が0.32のアンピシリン耐性大腸菌のストックを、100μg/mLのアンピシリンを封じ込めた10mLのLBで10倍、100倍、1000倍に希釈した。24時間にわたり、各細菌培養の100µLアリコートを96ウェルマイクロプレートの1ウェルに定期的に移し、SpectraMax iD3リーダーとSoftMax Proソフトウェアを使用して600 nmの吸光度を測定することにより、OD600の変化を測定した。インストゥルメンテーションの設定を表1に示す。

表1. 細菌増殖曲線のデータ取得に使用したプレートリーダーの設定。

カイネティック測定は時間ゼロで開始した。カイネティック測定を中断するには、SoftMax® Proソフトウェアの「Controls and Status」セクションで「Interrupt」ボタンをクリックしました。インストゥルメンテーションは、一時停止する前に、選択した読み取り領域内の残りのウェルの読み取りを終了した。その後、プレートをリーダーから外した。カイネティック測定の次の時点について、培養物から新しいサンプルセットを採取し、プレートをリーダーに挿入した。元のデータファイルを開き、"Append "ボタンをクリックして、カイネティック測定にさらにデータポイントを追加した（図1）。Append機能により、不連続な測定値が1つの連続した細菌増殖曲線に連結された。細菌増殖条件を比較するために、SoftMax® Proソフトウェアで細菌増殖曲線のオンセット時間を計算しました。細菌培養が0.6 OD600に到達するのに必要なオンセット時間を計算し、細菌増殖曲線の変曲点の傾きを計算するために、データ削減が設定されました（表2）。

表2. 細菌細胞増殖のさまざまなパラメータ。SoftMax® Proソフトウェアを使用すると、細菌増殖のさまざまな領域を分析できる。細菌が0.6 OD600に達したときをオンセット時間とした。

結果

細菌培養は、ラグ期、対数期、定常期、死滅期の4つの段階を経て進行する2（図2）。Methodsのセクションで説明した3つの異なる細菌培養から細菌増殖曲線を作成するのに十分なデータポイントを収集した（図3）。このデータは、各培養物がラグ期、対数期、定常期を異なる時間で進行することを示している。インストゥルメンテーションで測定される光散乱法は、個々のセルよりもむしろサンプルの質量に関係するため、死滅期はグラフでは観察されない。死細胞は依然としてサンプル中の質量を占め、光散乱に寄与するため、OD6003, 4

SoftMax® Proソフトウェアを使用すると、細胞増殖のさまざまなパラメーターを計算できます。細菌培養がある光学密度に達したときの開始時間を計算することで、増殖速度を定量的に比較することができる。この例では、10倍に希釈した培養で最も早い開始時間が観察された（表2）。より希釈度の低い培養物が最も短いオンセットタイムを持つだろうと予測したが、解析はそれを支持した。

指数関数的成長の期間を反映する成長曲線の変曲点の傾きも、SoftMax Proソフトウェアのデータ削減機能を使用して計算することができます（表2）。

結論

細胞増殖をモニターする実験は、その長さに大きなばらつきがあり、1つの実験が何時間も何日もプレートリーダーを占有することを期待するのは非現実的です。SoftMax Proソフトウェアの不連続カイネティクス機能により、研究者はマイクロプレートリーダーを占有し続けることなくカイネティック測定を行うことができます。さらに、厳密に制御された環境条件を必要とする繊細な細胞タイプも、細胞の健康や生存に影響を与えることなく測定できます。最後に、異なる増殖条件を定量的に比較するために、SoftMax Proソフトウェア内で計算式とデータ削減を設定し、さまざまな解析を実行することができます。計算式の書き方については、当社の知識ベースサイト（https://support.moleculardevices.com/s/global-search/%40uri#t=SalesforceArticle&sort=relevancy）をご覧になるか、技術サポートにお問い合わせください。

参考文献

• 渡辺真理代・大石伸志. 「藍藻（Microcystis aeruginosa）の培養条件下における毒性に及ぼす環境因子の影響". 応用・環境微生物学 49.5 (1985)： 1342-1344.
• Zwietering, M. H., et al. "Modeling of the bacterial growth curve.". 応用・環境微生物学 56.6 (1990)： 1875-1881.
• サットン、スコット "光学密度による微生物セルの測定". Journal of Validation Technology 17.1 (2011)： 46.
• Maier, Raina M. "Bacterial Growth（バクテリアの成長）". 環境微生物学。第3版。37-54. Elsevier Inc. Web. 2009.