Application Note FlexStation 3プレートリーダーを用いた
Fura-2, AMによる血小板カルシウムフラックスアッセイの開発

  • 血小板の細胞内Ca²⁺変化をリアルタイムでカイネティック測定することで、情報量の多いデータが得られます
  • キュベットから½面積のウェルプレートにアッセイを小型化できるため、血小板および化合物の使用量が減少します
  • オンボードピペッターにより、FlexStation 3プレートリーダーでのウェル間再現性とアッセイのロバスト性が向上
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はじめに

血小板は小さな無核の血液細胞で、血管の損傷部位で凝集して血栓(または血の塊)を形成し、出血を抑えることによって止血を仲介します。血小板が血管の損傷に不適切に反応すると、心臓発作や虚血性脳卒中などの血栓性疾患につながります。第1段階は接着(血小板が損傷した血管内皮の露出したマトリックスタンパク質に接着します)、第2段階は活性化(形状の変化や化学伝達物質の分泌など、受容体を介したイベント)、第3段階は凝集(血小板同士の接着)です。血小板接着の際、血小板はまず糖タンパク質VIレセプター(GPVI)を介してコラーゲンによって活性化され、次にアデノシン二リン酸(ADP)やトロンボキサンA2(TxA₂)のような様々な分泌型アゴニストによって活性化され、Gタンパク質共役型レセプター(GPCRs)を活性化します。これらの受容体は、血小板に発現する2種類のホスホリパーゼC(PLC)アイソフォーム、PLCßまたはPLCγ2のいずれかと結合し、その後カルシウム(Ca²⁺)が濃細管系(DTS)から細胞質に放出されます。DTSからのCa²⁺の枯渇は、貯蔵作動性Ca²⁺エントリーとして知られる機構を介して細胞外Ca²⁺の流入を引き起こします。これらのメカニズムによる細胞質Ca²⁺の上昇は、接着、形状変化、凝集を含む血小板機能のあらゆる側面を支えています。この血小板機能の重要な制御因子を、様々なアゴニストが健康状態や疾患においてどのように調節するかを理解することは、新規で安全な抗血栓薬の開発の指針となるでしょう。

ここでは、高親和性蛍光カルシウム指示薬Fura-2, AMを用いて、ヒトの主要組織であるヒト血小板のCa²⁺フラックスをマイクロプレートフォーマットで容易に測定することが可能であることを示します。96ウェルハーフエリアマイクロプレートでアッセイを小型化し、FlexStation® 3 マルチモードマイクロプレートリーダーのフレキシブルな液体移動機能を用いることで、アゴニストのEC₅₀値とアンタゴニストのIC₅₀値を迅速かつ確実に測定できることを示します。

方法

血小板調製

健常人ドナーから50mLの血液を採取し(地域の倫理に従って)、4%クエン酸ナトリウム(最終0.32%)を封じ込め、全血50mLあたり7.5mLの酸性クエン酸ブドウ糖(110mMグルコース、80mMクエン酸、120mMクエン酸ナトリウム)を加えます。次にチューブを100 gで20分間遠心し、パスツールピペットで血小板豊富血漿(PRP)を除去します。血小板を数えます。次にFura-2, AMを最終濃度2 µMになるように加え、チューブを反転させて穏やかに混合し、暗所30℃で60分間、15分ごとにチューブを反転させながらインキュベートします。最後に、PRPを350 gで20分間遠心し、血小板ペレットを4 x 10⁸ platelets/mLのチロ-ド液に懸濁します。血小板を15分間静置します(図1)。

図1. FlexStation 3プレートリーダーでFura-2、AMを用いた血小板Ca²⁺ アッセイのワークフロー

カルシウムフラックス測定

40μLの血小板懸濁液(最終濃度の阻害剤またはビヒクルを含む)を、黒壁透明底96ウェルプレートの1カラム の各ウェルに添加します。データ取得前にFlexStation 3プレートリーダー(37℃に設定)で5分間インキュベートします。

励起波長340 nmおよび380 nm、発光波長510 nmで検出されたベースライン蛍光シグナルを測定します。オンボードピペッターを用い、15秒後に5Xアゴニストを10 μL加え、さらに285秒間シグナルをモニターします(図2)。

図2. SoftMax® Proデータ収集・解析ソフトウェアの推奨ソフトウェア設定。

測定結果

アゴニストEC₅₀値の測定

血小板GPCRsの3つの既知のアゴニストに対する濃度反応曲線を求め、その後のアンタゴニスト研究のためのEC₈₀値を計算するために、最初の実験を行いました。選ばれたリガンドはADP、U46619、架橋コラーゲン関連ペプチド(CRP-XL)で、それぞれプリン作動性P2Y1レセプター、プロスタノイドTPレセプター、GPVIレセプターに作用します。アゴニストの添加は、細胞質Ca²⁺の急激な上昇を引き起こし、その結果、510 nm Emissionで検出された340 nmと380 nmの両方のシグナルに変化が生じました(図3)。

図3. 96ウェルマイクロプレートの8ウェルから得られた代表的な340 nmと380 nmの蛍光シグナルトレース。CRP-XL(7種の濃度とビヒクルコントロール)で刺激したFura-2、AMローディング血小板からFlexStation 3で得られたシグナル。

図4は、SoftMax® Proソフトウェアで340/380比のデータを解析した結果であり、カラム-カラム間および日間値と同様に、これまでの社内値および文献値と一致するEC₅₀値が得られました(表1)。

   Mean EC  N  Assay Z’
 ADP  0.71 µM  10 -0.4
U46619 0.12 µM 13 0.49
CRP-XL 0.36 µg/mL 11 0.61

表1. 図4に示したE/[A]曲線解析の要約。アッセイZファクターはアッセイのロバスト性を定量化する統計的試みです。Zファクターが0.5から1.0の間は優れたアッセイであり、0から0.5の間は限界のアッセイとみなされます。

図4. Fura-2、AM負荷ヒト血小板におけるADP(-)、U46619(-)およびCRP-XL(-)に対する濃度反応曲線。データは平均値±sem、5つの独立した実験からn≧10。

反応の再現性と蛍光シグナルの大きさから、U46619とCRP-XLのアッセイZ'ファクターが得られ、このアッセイがその後のIC₅₀値の決定に適していることが示されました。

アンタゴニストIC₅₀値の測定

アンタゴニストIC₅₀試験のために、個々のアゴニストEC₈₀濃度を毎日測定しました。EC₅₀/₈₀値が許容範囲内であれば、FlexStation 3プレートリーダー内で5分間の平衡化ステップの間、阻害剤をFura-2、AM負荷血小板とインキュベートしました。ADPではアッセイウインドウが小さかったため、阻害曲線はTPレセプター(U46619を使用)とGPVIレセプター(CRP-XLを使用)のみに作成することにしました。TPレセプターに対しては、トロンボキサンA₂レセプター拮抗薬GR32191Bを使用することにし、GPVIレセプターに対しては、GPVIレセプターの下流にある異なるキナーゼを標的とします、最近報告された2つの阻害剤を使用することにしました。

プロスタノイドTP受容体拮抗薬GR32191Bの濃度を増加させると、U46619のEC₈₀チャレンジに対するCa²⁺応答の濃度依存的な減少が観察されました(図5)。算出されたIC₅₀は5nMであり、キュベットベースのCa²⁺アッセイで得られた以前の値とよく比較されました(データは示していません)。

図5. U46619(-)、および8つの異なる濃度のGR32181B(-)存在下でのU46619(EC₈₀濃度)の平均濃度効果曲線。データは平均値±sem、5回の独立した実験からn≧10。

図6では、最近報告された2つの新規チロシンキナーゼ阻害剤がCRP-XLに対する反応に及ぼす影響を見ることができます。CRPXLに対する濃度反応曲線は、わかりやすくするために記載しました。これらのアッセイ条件下で、阻害剤#1(赤線)と阻害剤#2(緑線)のIC₅₀推定値は、それぞれ0.15μMと0.16μMと計算されました。

図6. キナーゼ阻害剤#1(-)およびキナーゼ阻害剤#2(-)存在下でのCRP-XL(-)およびCRP-XL(EC₈₀濃度)の平均濃度-効果曲線。データは平均値±sem、5回の独立実験からn≧10。

このアッセイから計算されたIC₅₀値は、より低スループットのマイクロプレートベースのCa²⁺アッセイで得られた以前のデータとよく比較されました(データは示していません)。

結論

細胞内Ca²⁺は血小板機能のマスターレギュレーターであり、血栓性疾患において重要な役割を担っているが、脆弱なヒト血小板では測定が困難です。ここで述べたFlexStation 3プレートリーダーアッセイにより、アゴニストのEC₅₀とアンタゴニストのIC₅₀の正確かつ迅速な推定値の測定が可能となり、この一次ヒト組織を用いた新規薬剤のミディアムスループットスクリーニングをサポートすることができます。

謝辞

Alexander P. Bye & Jonathan M. Gibbins: レディング大学 Simon Lydford: モレキュラー・デバイス(UK)社

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