Application Note SpectraMax蛍光マイクロプレートリーダーでの
EarlyTox Live/Deadアッセイキット
- シンプルなワークフロー-培地除去の有無に関わらずウェル内で直接測定
- マイクロプレートフォーマットによるスループットの向上
- SoftMax Proソフトウェアで設定済みのプロトコル
PDF版(英語)
はじめに
細胞生存率アッセイは、薬剤候補、パスウェイ活性化剤・ 阻害剤、レポーター遺伝子など、様々な治療の効果を評価するためにしばしば行われます。細胞生存性をアッセイする最も一般的な方法の一つは、マイクロプレートリーダーでの蛍光検出です。ここでは、EarlyTox™ Live/DeadアッセイキットとSpectraMax® 蛍光マイクロプレートリーダーを組み合わせて使用した結果をご報告します(図1)。
EarlyTox Live/Deadアッセイキットには、哺乳動物細胞での使用に適した生細胞または死細胞のマーカーが2種類含まれています。カルセイン AM は広く使用されている生細胞マーカーです。非蛍光性のカルセインAMは無傷の細胞膜を透過し、細胞内のエステラーゼによって蛍光性のカルセインに変換されます。生細胞は細胞質内で強い緑色蛍光で染色されます。細胞増殖アッセイや、生細胞染色のみを必要とするその他のアッセイでは、EarlyTox™ Live Cell アッセイキット(Explorer kitのP/N R8342、Bulk kitのP/N R8343)に含まれるように、カルセインAMを単独の試薬として使用することができます。
エチジウムホモダイマー-III(EthD-III)は実質的に無蛍光で、無傷の細胞膜に対して不透過性です。細胞死を伴う細胞膜の完全性が損なわれた場合、EthD-IIIは細胞内に入り、核酸に結合し、死細胞で明るい赤色の蛍光を発します。細胞膜の完全性に影響を及ぼす細胞毒性イベントは、この方法を用いて正確に評価できます。
カルセインおよびEthD-IIIからの蛍光シグナルは、SpectraMax蛍光マイクロプレートリーダーを用いて検出することができ、SoftMax® Proソフトウェアの設定済みプロトコルを用いて迅速に解析し、生細胞と死細胞の相対量を決定することができます。
図1: EarlyTox Live/Deadアッセイのワークフロー
材料
- EarlyTox Live/Deadアッセイキット
◦Explorerキット(2プレートサイズ): モレキュラーデバイス P/N R8340
◦バルクキット(10プレートサイズ): モレキュラーデバイス P/N R8341 - HeLa細胞(ATCC)
- スタウロスポリン(Sigma)
- 96ウェル黒色透明底マイクロプレート(Corning)
- SpectraMax蛍光マイクロプレートリーダー
方法
HeLa細胞を100μLの培地中、1ウェルあたり15,000個、黒色透明底マイクロプレートにプレーティングしました。37℃、5%CO2インキュベーター内で一晩培養しました。その後、アポトーシスを誘導するために、10μMから0.01μMまでのスタウロスポリンの1:2希釈液で24時間処理しました。各濃度で4複製を行いました。
カルセインAM/EthD-IIIの2X作業溶液は、カルセインAMとEthD-IIIのストック溶液をPBSに加え、各色素の濃度が6 µMになるように調製しました。100μLの2X作業溶液を各アッセイウェルに加え、最終容量を200μLとし、各染料の最終濃度を3μMとしました。プレートを室温で 50 分または 2.5 時間インキュベートしました。その後、SpectraMax® i3 マルチモードマイクロプレートリーダーを用い、SoftMax Proソフトウェアであらかじめ設定したプロトコルを用いて、表1に示した設定でプレートを下から読み取りました。注意:メデュームを除去した後、カルセインAMとEthD-IIIの1X溶液を添加することは任意であり、必要であればバックグラウンド蛍光を減少させるのに役立ちます。
Parameter | Setting |
---|---|
Read mode | Fluorescence |
Read type | Endpoint |
Wavelengths |
Lm1: Ex = 495 nm, Em = 530 nm Lm2 Ex = 530 nm, Em = 645 nm |
PMT and optics |
PMT gain: Automatic/p> Flashes per read: 6 Read from bottom |
表1. SpectraMax i3 マルチモードマイクロプレートリーダーの設定。蛍光検出機能を持つ他の SpectraMax マイクロプレートリーダーでも同様の設定が可能です。Bottom readを推奨しますが、この機能がない場合はtop readを使用してもかまいません。
SoftMax Pro ソフトウェアの設定済みEarlyTox Live/Deadアッセイプロトコールは、緑色/赤色比を自動的に計算し、化合物濃度などの実験条件に対してプロットすることができます。このプロトコールでは、実験細胞サンプル中の生細胞と死細胞の割合も計算できます。これらの計算を行うには、アッセイプレートに追加のコントロールをセットアップする必要があります *1。
結果
スタウロスポリンで処理したHeLa細胞は明確な濃度反応を示し、これは生細胞(緑色蛍光)と死細胞(赤色蛍光)のシグナル比として容易に定量できました(図2)。全体として、RFU値は50分間インキュベートした細胞よりも2.5時間インキュベートした細胞の方が高かったです。しかし、スタウロスポリン処理による緑色/赤色比の増加倍率は、どちらの時点でも同じでした。このように経時的な増加倍率が安定しているため、インキュベーション時間を柔軟に変更しても一貫した結果が得られます。どちらの場合も、EC50値はそれぞれ200 nMと207 nMで同等でした。
図2. スタウロスポリンで24時間処理したHeLa細胞の濃度反応曲線。細胞をカルセインAMおよびEthD-III中で50分間(-)または2.5時間(-)インキュベートしました。濃度曲線は、赤(645 nm発光)RFUに対する緑(530 nm発光)RFUの比をY軸としてプロットしました。SoftMax Proソフトウェアで4-parameter curve fitを適用しました。EC50値は、50分インキュベーションで200 nM、2.5時間インキュベーションで207 nMでした。
結論
SpectraMaxマイクロプレートリーダーと併用することで、EarlyTox Live/Dead アッセイキットは、シンプルなワークフローとマイクロプレートフォーマットによるスループットの向上により、生細胞と死細胞の直接測定を可能にします。幅広いインキュベーション時間にわたって一貫した結果が得られ、ワークフローの柔軟性を提供します。SoftMax Proソフトウェアの設定済みプロトコールは、装置の設定を最適化し、自動データ解析により結果までの時間を短縮します。
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